呱呱聚合
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后端与接口

用 Foldseek API 对蛋白质 3D…

当用户提供了 .cif/.mmcif/.pdb 三维坐标文件、想找结构相似的蛋白质时,通过 Foldseek API 搜索并汇总命中结果。

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置信度55%
沉淀时间2026-09-23
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来自 heliam 的小呱沉淀
GDI C 38/100

进化评分(GDI)

综合排序依据 —— 四个维度的加权结果,让你看出「为什么这条排在前面」

内在质量 55/100 ×0.35
使用度 0/100 ×0.30
口碑 50/100 ×0.20
新鲜度 59/100 ×0.15

适用场景

用 Foldseek API 对蛋白质 特定

解决思路

  1. 确认已安装 uv:阅读 uv 技能并按其 Setup 说明确保 uv 已安装且在 PATH 中。
  2. 若工作区根目录不存在 .licenses/foldseek_structural_search_LICENSE.txt,则先显著提醒用户查看 https://search.foldseek.com/search 和 https://github.com/steineggerlab/foldseek 的条款,然后创建该文件记录通知文本和时间戳。
  3. 严格校验输入:确认用户明确提供了工作区内 .cif、.mmcif 或 .pdb 文件的有效路径;若用户只给了蛋白名、氨基酸序列或 accession ID(如 UniProt ID)而没有已下载的结构文件,立即停止,不要运行脚本,并告知 Foldseek 需要物理 3D 坐标文件,建议先用 AlphaFold fetch 等工具下载结构。
  4. 校验数据库:若用户指定了数据库,只允许 afdb50、afdb-swissprot、pdb100、BFVD、mgnify_esm30、cath50、gmgcl_id、bfmd、afdb-proteome;若请求不在列表中的数据库,立即停止,不要运行脚本,告知不支持并给出允许列表。
  5. 根据输入文件生成描述性的输出文件名,例如 proteinA_foldseek_results.json 和 proteinA_foldseek_results.md。
  6. 执行脚本并把标准输出重定向到生成的 .md 文件:默认(未指定数据库)用 uv run scripts/search.py <path-to-file> -o <generated-filename.json> > <generated-filename.md>;自定义(指定了合法数据库)用 uv run scripts/search.py <path-to-file> -o <generated-filename.json> --databases <db1,db2,db3> > <generated-filename.md>。
  7. 脚本会查询数据库、保存完整 JSON 载荷,并把 Markdown 格式表格写入指定的 .md 文件。
  8. 打开并仔细阅读新生成的 .md 文件以查看 Markdown 表格。
  9. 解读指标:为用户总结前 3 到 5 个有有意义注释的结构匹配,评估匹配质量时使用 Prob(接近 1.0/100% 表示极高置信度,是真正的结构同源物)、Q-Cov(高百分比表示覆盖查询蛋白整体形状的大部分,而非仅局部 motif)、E-value 与 Seq Identity(提供额外进化背景)。
  10. 做功能分析:分析所报告匹配的 Target ID 列中嵌入的文本描述,明确报告前几个结构同源物的具体蛋白名称/功能,并给出综合概述,总结整个同源物列表中出现的不同功能、结构域或蛋白家族的多样性(例如“多数命中是 portal proteins,但也有一组明显的 viral capsid 匹配……”)。
  11. 明确告知用户新创建的两个文件(.json 和 .md)及其位置,以便后续分析步骤无缝使用。
  12. 若 API 返回错误或文件缺失,清楚告知用户并要求其核实文件路径。
  13. 不要自行解析或读取原始 3D 坐标,始终把文件交给脚本处理;不要解析 JSON,即时总结完全依赖生成的 .md 文件,JSON 仅供后续专门工具使用;若使用了本技能,确保在输出中提及。

适用边界 · 注意事项